Нейронные сети, особенно в центральной нервной системе (ЦНС), эволюционировали для поддержания обширных функциональных возможностей при одновременном обеспечении стабильности. Несколько физиологических “тормозов”, которые поддерживают стабильность нейронных сетей в здоровом состоянии, быстро становятся помехой после травмы. Эти “тормоза” включают торможение со стороны внеклеточной среды, внутренние факторы нейронов и контроль пластичности нейронов. Существуют четкие различия между нейронными сетями в периферической нервной системе (ПНС) и ЦНС. В основе этих различий лежит компромисс между сниженными функциональными возможностями и повышенной адаптивностью за счет формирования новых связей и новых нейронов. В ПНС есть “посредники”, которые стимулируют нейрорегенерацию и пластичность, в то время как в ЦНС есть “тормоза”, которые их ограничивают. Изучая, как работают эти “посредники” и “тормоза", и определяя ключевые процессы и молекулы, участвующие в них, мы можем попытаться применить эти теории к нейронным сетям ЦНС, чтобы повысить ее адаптивность. Разница в адаптивности между ЦНС и ПНС приводит к разнице в нейрорегенеративных свойствах и пластичности. Пластичность обеспечивает быстрое функциональное восстановление способностей в краткосрочной и среднесрочной перспективе. Нейрорегенерация включает синтез новых нейронов и связей, предоставление дополнительных ресурсов в долгосрочной перспективе для замены поврежденных в результате травмы и достижение длительного функционального восстановления. Следовательно, понимая факторы, влияющие на нейрорегенерацию и пластичность, мы можем объединить их преимущества и разработать методы реабилитации. Методы реабилитационных тренировок, скоординированные с фармакологическими вмешательствами и / или электростимуляцией, способствуют составлению точного, целостного плана лечения, который обеспечивает функциональное восстановление после травм нервной системы. Кроме того, эти методы не ограничиваются движением конечностей, поскольку другие функции, утраченные в результате травмы головного мозга, такие как речь, также могут быть восстановлены с помощью соответствующей программы тренировок.
Согласно кратким фактам и цифрам о травмах спинного мозга (SCI), опубликованным Национальным центром статистики травм спинного мозга в 2019 году, ежегодно в Соединенных Штатах регистрируется около 17 000 новых случаев SCI [
Современные варианты лечения, доступные после травмы ЦНС, ограничены, часто они состоят из паллиативной помощи [
Изменения нейрорегенерации и пластичности происходят сначала на региональном уровне в попытке восстановить непосредственную функцию и удовлетворить краткосрочные потребности нервной системы. Пока это происходит, длительный процесс восстановления функций с большей постоянством происходит на клеточном уровне. Когда эти процессы сочетаются с методами реабилитации [8], синергетический эффект приводит к функциональному восстановлению нервной системы после травм, полученных в полевых условиях.
ПНС и ЦНС имеют несколько различий с точки зрения баланса между “фасилитаторами” и “тормозами”, которые проиллюстрированы на рис.
Внешние и внутренние факторы, влияющие на нейрорегенерацию в центральной и периферической нервной системе. PTEN. Гомолог фосфатазы и тензина; SOCS3. Подавитель цитокиновой сигнализации 3; NGF. Фактор роста нервов; MAG. Миелин-ассоциированный гликопротеин; Omgp. Олигодендроциты.гликопротеин миелина; CSPG. Протеогликаны сульфата хондроитина; KSPG. Протеогликаны сульфата кератина
Первоначальная травма приводит к острой аксональной дегенерации (AAD), в результате чего дистальный и проксимальный концы отделяются в течение 30 минут после травмы [9]. Это важнейший процесс, инициируемый первоначальным притоком кальция [10], как показано на рис.
Каскад реакций от выброса кальция и методы активации генов, связанных с регенерацией (RAGs). MAPKKK dlk1. Активируемая митогеном протеинкиназа kinase kinase dlk-1; пЕрк. Фосфорилированные внеклеточные протеинкиназы, регулируемые сигналом; HDAC5. Гистондеацетилаза 5; RAGs. Гены, ассоциированные с регенерацией; PTEN. Гомолог фосфатазы и тензина; PI3K. Фосфоинозитид-3-киназы; АКТ. Протеинкиназа B; mTORC1. Мишень рапамицинового комплекса 1 для млекопитающих или механистическая мишень рапамицинового комплекса 1; SOCS3. Подавитель цитокиновой сигнализации 3; JAK/ STAT 3. Янус-киназа/ преобразователь сигналов и активатор транскрипции 3
В результате повреждения аксона временно повышается проницаемость аксонов для кальция, которая длится минуты. Этот длительный доступ создает импульс кальция высокой концентрации, который активирует несколько факторов, включая кальпаины [15], как показано на рис.
Для поддержания развития колбочек роста необходим крупномасштабный синтез белка. Сами аксоны содержат около 3000 мРНК, которые специфичны для поддержания, репарации и регенерации аксонов. Аксоны также содержат рибосомы и структуры, подобные Гольджи, которые локально продуцируют белки [18]. Кроме того, приток кальция вызывает несколько важных эффектов. Он активирует трансляцию импортинов и RanBP, которые транспортируются ретроградным действием, захватывая фрагменты виментина и Erk и индуцируя их транспорт в ядро, чтобы вызвать экспрессию генов, связанных с регенерацией (RAGs) [
Изменения происходят в дистальном участке аксона до воссоединения с проксимальным концом. Аксон за пределами повреждения быстро дегенерирует в активном процессе – валлеровской дегенерации – и запускается истощением быстро деградирующего NMNAT2, контролируемого SARM1 [21, 22]. В течение 48 часов миелиновые оболочки начинают отделяться от надрезов Шимдта-Лантермана, прежде чем сформировать структуры, похожие на шарики. Первоначально клетки Шванна фагоцитозируют остатки миелина [
После удаления остатков миелина из дистальных аксонов может начаться процесс регенерации, поскольку сняты “тормоза”. Экспрессия мРНК фактора роста нервов (NGF) повышается в пять-семь раз в течение 2 недель. Это увеличение можно отнести непосредственно к воздействию нервных фибробластов и шванновских клеток [25] и косвенно к макрофагам, которые стимулируют эти клетки производным макрофагов интерлейкином-1 [
В нескольких случаях наблюдалось ограничение по времени, доказывающее, что регенерация может происходить только в пределах узкого окна после травмы. Регенерация протекает в ПНС со скоростью 1 мм в день и может преодолевать промежутки в 1 см. В течение 2-3 месяцев шванновские клетки теряют способность передавать сигналы о регенерации. Таким образом, для длинной конечности, такой как рука или нога, только проксимальная конечность может быть реиннервирована, при этом шансы на дистальную реиннервацию резко снижаются [
Клинически наблюдаемый факт заключается в том, что регенеративная способность нервной системы снижается с возрастом, что соответствует остаточному функциональному резерву индивидуумов. Пейнтер и его коллеги воспроизвели это явление на старых мышах. Однако они обнаружили, что причиной снижения была не потеря регенеративной способности аксонов; вместо этого, причиной потери было снижение глиальной функции. Старение глии приводит к медленному удалению остатков миелина, вызывая более медленную валлеровскую дегенерацию. Таким образом, эта нарушенная валлеровская дегенерация может привести к общему нарушению регенеративной способности нервной системы [32,
Высокий приток кальция, как описано выше и на рис.
Известно, что повреждения ЦНС приводят к плохим прогнозам из-за неспособности регенерировать нейроны, в отличие от реакции на повреждения ПНС [37]. Кроме того, это различие наблюдается не у всех видов. Грызуны могут восстанавливать миелиновые оболочки почти всех демиелинизированных аксонов [
Нейрорегенерация в ЦНС отключена из-за отсутствия внутренней способности к регенерации аксонов ЦНС и внешнего торможения, обусловленного окружающей средой ЦНС.
Аксоны ЦНС теряют свою регенеративную способность в процессе развития. Было обнаружено, что эмбриональные аксоны обладают гораздо большей способностью к росту в ЦНС, чем аксоны взрослого человека. Эмбриональные нейроны, имплантированные во взрослую ЦНС, могут интенсивно расти, несмотря на тормозящую среду. Кроме того, было показано, что предшественники эмбрионального спинного мозга принимают сигналы от аксонов хозяина для полной интеграции со взрослым спинным мозгом, действуя как своего рода ретранслятор [
PTEN и SOCS3 - это белки, которые, как было обнаружено, играют роль в инактивации регенерации в нейронах ЦНС путем ингибирования передачи сигналов AKT и JAK / STAT соответственно, как показано на рис.
Аксоны содержат только подмножество молекул, присутствующих в телах клеток. Без необходимых молекул регенерация нарушается. Некоторые из критических молекул, которые отсутствуют, включают интегрины, несколько различных рецепторов факторов роста и рибосомы. Интегрины способствуют реорганизации гликопротеинов внеклеточного матрикса, в то время как рецепторы факторов роста реагируют на факторы роста в окружающей среде. В среде поврежденной ЦНС значительно повышается уровень тенасцина, гликопротеина внеклеточного матрикса, после травмы ЦНС. К сожалению, нейроны ЦНС взрослого человека не экспрессируют тенасцинсвязывающий интегрин. Многообещающие результаты наблюдались, когда α9β1 тенасцинсвязывающий интегрин в сочетании с β1 связывающим интегрин активатором киндлином-1 экспрессировался в измельченных ганглиях спинного корешка с помощью трансгенных аденоассоциированных вирусов. Киндлин-1 был необходим для ослабления ингибирования протеогликанов хондроитинсульфата (CSPG). Через двенадцать недель после травмы аксоны выросли с уровня С6–7 до уровня выше С1, покрывая расстояние более 25 мм и 7 уровней позвоночника по нормальному пути. Дальнейшие анатомические и электрофизиологические анализы показали, что соединения внутри спинного мозга были топографически правильными. Наблюдалось восстановление в ответ на механическое давление, тепловую боль и хождение по лестнице [49].
В дополнение к снижению или ингибированию экспрессии генов во время созревания аксонов ЦНС, недостаток определенных молекул в аксонах может быть обусловлен нарушением механизмов транспортировки к месту повреждения. Интегрины, вирусно экспрессируемые в сенсомоторной коре головного мозга взрослой крысы и красном ядре взрослого человека, но не в ганглиях дорсального корешка, не локализовались в аксонах. Однако при экспрессии в развивающейся коре головного мозга крыс (послеродовой день 5 или 10) наблюдалась четкая локализация в аксонах мозолистого тела и внутренней капсулы. В нейронах ЦНС новорожденных грызунов интегрин беспрепятственно проходит по кортикоспинальному тракту; однако у взрослых грызунов транспорт интегрина не продолжается дальше начального сегмента, ограничивая его функцию [50]. Таким образом, существует различная способность аксонального транспорта трансмембранных белков in vivo, которая зависит от подтипа нейронов и их возраста.
Другим методом усиления внутренней регенеративной способности является устранение любого торможения, действующего на этот путь. Многие ингибирующие эффекты на ЦНС передаются через RhoA; пример показан на рис.
Механизм действия Nogo-A. Nogo-A взаимодействует с несколькими рецепторами, наиболее важными из которых являются NgR1, LINGO1 и p75/TROY. Это взаимодействие создает каскад, который ингибирует нейрорегенерацию в колбочках роста нервных клеток. LINGO1. Богатый лейцином повтор и иммуноглобиноподобный домен, содержащий белок 1; p75. Рецептор нейротрофина; TROY. Суперсемейство рецепторов фактора некроза опухоли, член 19; RhoA. Гомолог семейства Ras A
Когда аксон ЦНС размещается вне его типичного окружения, например, в разрешающей среде периферического нерва, в определенной степени может наблюдаться регенерация [56]. Однако этот эффект ограничен регенерацией в разрешающей среде трансплантата ПНС, поскольку он не распространяется на ткани ЦНС [
Глиальный рубец
Миелин в ЦНС в значительной степени происходит из олигодендроцитов, в отличие от миелина в ПНС, где он происходит из шванновских клеток. Ключевое различие шванновских клеток и олигодендроцитов заключается в том, что последним для выживания требуются сигналы аксонов. В ЦНС пространство и ресурсы ограничены; таким образом, во время развития выживают только олигодендроциты, которые вступают в контакт с аксонами и получают аксональные сигналы, в то время как остальные подвергаются апоптозу. Эта характеристика сохраняется и в зрелом возрасте и способствует наблюдаемому торможению.
Таким образом, при травме аксональные сигналы теряются, в результате чего олигодендроциты подвергаются либо запрограммированной клеточной гибели, либо старению. В результате миелиновые оболочки остаются, а их обломки не удаляются. Продолжительность этого процесса у крыс составила 22 месяца [
Другим фактором, способствующим образованию глиальных рубцов, является недостаточный клиренс миелина макрофагами и микроглией в ЦНС. Микроглии являются резидентными макрофагами ЦНС и составляют 10-15% клеток в ЦНС [
Остается открытым вопрос, является ли образование глиальных рубцов побочным продуктом патологической активности в ЦНС или же оно служит эволюционной цели поддержания здоровья мозга. Глиальные рубцы состоят из реактивных астроцитов в качестве основного компонента наряду с микроглией, эндотелиальными клетками, фибробластами и базальной мембраной [
Таким образом, возможность избирательного отключения глиальных рубцов и ингибирующих сигналов во внеклеточном матриксе была бы полезна при нейрорегенерации.
Астроциты представляют собой ключевой тип клеток, который, как известно, ингибирует регенерацию аксонов. Однако среди астроцитов существует большая гетерогенность, включающая как разрешающие, так и ингибирующие субпопуляции астроцитов. Сравнение этих двух типов показало, что ингибирующими молекулами являются протеогликаны хондроитинсульфата (CSPG), которые активируются после травмы [64,
Подобно CSPG, протеогликаны кератансульфата (KSPG) содержат N-ацетилглюкозамин 6-O-сульфотрансферазу-1 вместо CS-GAG. Было также обнаружено, что истощение KSPG подавляет торможение регенерации нервов [
Миелин
Миелин, вырабатываемый олигодендроцитами, состоит из нескольких белков, влияющих на нейрорегенерацию, каждый из которых выполняет свои собственные функции. С точки зрения регенерации ключевым является семейство NOGO (NI-250), особенно Nogo-A [70]. Nogo-A участвует в аутоиммунно-опосредованной демиелинизации, которая включает рассеянный склероз (MS) и экспериментальный аутоиммунный энцефаломиелит (EAE). Nogo-A может взаимодействовать с нейронами через два основных конца: амино-Nogo-конец через неизвестный рецептор и Nogo-66-конец через NgR1, p75, TROY или LINGO1, как показано на рис.
Какими бы многообещающими ни были ингибирование NOGO, MAG или OMgp, были проблемы с точки зрения нашего понимания их биологии. Нокауты Nogo-A или тройные нокауты (Nogo-A, MAG и OMgp) модулируют рост аксонов; однако они не приводят к усиленной регенерации аксонов в поврежденном спинном мозге. Следовательно, они могут не играть центральную роль в нарушении регенерации, а вместо этого выполнять вспомогательную или способствующую роль [74].
Текущая проблема может заключаться в том, что мы ищем серебряную пулю для лечения центральной проблемы недостаточности регенерации, но, учитывая сложность мозга, может потребоваться тонкая модуляция нескольких способствующих факторов для поддержания существующей функции мозга, одновременно способствуя отрастанию аксонов и, таким образом, облегчая нейрорегенерацию.
Известные ингибирующие белки в ЦНС перечислены в таблице
Пластичность нервной системы оптимизирует нейронные сети во время онтогенеза, филогенеза, физиологического обучения и травмы головного мозга. В контексте черепно-мозговой травмы мы предполагаем, что нейропластичность в первую очередь принимает форму кортикального перестроения. Функции, утраченные в результате повреждения головного мозга, могут быть восстановлены, когда поврежденная кора переназначается в другую часть коры [
У здоровых людей пластичность возникает постоянно, обеспечивая формирование памяти и справляясь с функциональными требованиями [
Механизм, лежащий в основе переназначения коры головного мозга, можно отнести к различным формам функциональной и структурной нейропластичности, что важно для метапластичности [
После перерезания спинного мозга у взрослых крыс в спинном и головном мозге были созданы обходные цепи. Хотя наблюдался мелкий моторный контроль поврежденных областей, в результате такой пластичности наблюдался существенный моторный контроль основных двигательных функций. Это еще раз демонстрирует важную роль нейропластичности в краткосрочном функциональном восстановлении человека после травмы [
Важнейшим аспектом, который способствовал описанному выше функциональному восстановлению, является процесс реабилитации. Без реабилитации новые связи, возникающие в результате повышения пластичности, не имели бы особого смысла. Реабилитация - важнейший процесс, обеспечивающий необходимые стимулы для доведения этих вновь сформированных контуров до зрелости. Важно отметить, что тип функционального восстановления зависит от типа реабилитации в период повышенной пластичности. Только функции, которые были устранены во время реабилитации, показали повышенное восстановление, в то время как функции, не устраненные во время реабилитации, показали плохое восстановление [
Следовательно, возможность реактивировать пластичность в мозге взрослого человека может быть очень полезна для улучшения функционального восстановления и нейрорегенерации. Физиологически в жизни человека существует период, в течение которого мозг обладает высокой пластичностью, что позволяет ему активно формироваться в зависимости от опыта. Это называется критическим периодом. Этот период длится у людей вскоре после рождения и до 5-летнего возраста. Дети с травмами головного мозга демонстрируют значительное восстановление двигательных навыков; однако это происходит за счет когнитивных способностей, поскольку области, критичные для познания, были заменены областями, ориентированными на сенсомоторные навыки [
Понимание того, как активируется пластичность, важно для реактивации в критические периоды. При перерезанном седалищном нерве вход в денервированную область моторной коры может быть зарегистрирован спустя несколько часов. Это открытие указывает на то, что ранее подавленные нервы в некоторой степени активируются. Было постулировано, что в дополнение к нормальным активно функционирующим нервам существуют внутрикорковые связи, подавляемые ГАМКергическими тормозными цепями. Эти тормозные цепи модулируют и перенастраивают репрезентации моторной коры на основе требований и имеющихся стрессоров [
ГАМКергические цепи также играют решающую роль в создании точно рассчитанной генерации потенциала действия, которая достигается за счет того, что средние возбуждающие и тормозные сигналы схожи, но не равны [
В среднесрочной перспективе необходимо разработать новые соединения для замены поврежденных цепей. Эта замена может быть произведена в дендритном масштабе путем стимулирования образования новых соединений между нейронами. Формирование дендритных отростков, которые являются мембранными выступами дендритов, позволяют формировать новые связи между нейронами, стимулируя обучение восстановлению функции [108]. Динамика дендритов позвоночника может хранить синаптическую информацию из-за их большого разнообразия форм, размеров и количества [
Позже было обнаружено, что хондроитиназа также расщепляет стабилизирующую периневрональную сеть, которая окружает ГАМКергическую сеть во время созревания нейронов. Формирование этой периневрональной сети (PNN) совпадает с окончанием критического периода пластичности [
Целью PNN является ограничение образования дополнительных связей с гамкергической нейронной сетью. У здорового взрослого человека это ограничение служит для поддержания стабильного набора параметров в нейронных цепях для нормальных повседневных функций. Однако во время травмы это становится препятствием, поскольку нейронные цепи все еще фиксированы, но часть сети повреждена. Такая ситуация приводит к наблюдаемому неврологическому и психологическому дефициту. Однако возможность добавлять новые связи и модулировать существующие связи в ингибирующей ГАМКергической сети повысила бы способность существующих кортикальных карт реорганизовываться в зависимости от требований, предъявляемых к нейронной сети, тем самым обеспечивая пластичность и обеспечивая метод функционального восстановления в краткосрочной и среднесрочной перспективе.
Исследования в области нейрореабилитации начались после двух мировых войн с целью оказания помощи солдатам с травмами головного мозга. Существует два основных типа травм нервной системы: огнестрельные ранения и взрывные травмы. Травматические профили этих двух травм различны. Огнестрельные ранения обычно приводят к более очаговому повреждению, связанному с ТСМ и очаговыми повреждениями головного мозга. Однако взрывные травмы и тупые травмы [
Как описано выше, когда реабилитация проводится после индуцирования пластичности, улучшается восстановление восстановленной функции. Однако существуют барьеры для перевода, когда такая реабилитация проводится у людей, в отличие от млекопитающих, не являющихся людьми. В дополнение к реабилитации людям требуется большее супраспинальное воздействие для достижения результатов, аналогичных результатам у млекопитающих, не являющихся людьми, что указывает на большую зависимость спинного мозга от головного [
Усиление регенерации ЦНС для функционального восстановления также может быть достигнуто с помощью физических тренировок. Экспрессия нейротрофического фактора головного мозга (BDNF) и скорость прорастания аксонов повышаются при тренировках на беговой дорожке [127]. BDNF, нейротрофин-3 (NT-3) и фактор роста нервов (NGF) являются одними из ключевых нейротрофических факторов, влияющих на регенерацию нервной системы. BDNF играет роль в стимуляции роста нейронов кортикоспинального тракта, NT-3 улучшает выживаемость этих нейронов, а NGF является важным трофическим фактором для сенсорных нейронов малого диаметра. Таким образом, необходимы доскональные знания об их воздействии на конкретные популяции нейронов для определения эффективного нацеливания, особенно при использовании наряду с другими вариантами лечения, такими как трансплантация стволовых клеток и мостовидные протезы нервов, для улучшения пластичности и нейрорегенерации [128]. Использование этих нейротрофических факторов привело к функциональному восстановлению у грызунов [
В дополнение к этим физиологическим методам восстановления функциональных тканей для достижения функционального восстановления были внедрены биоэлектронные имплантаты, которые в электронном виде передают сообщения через пробелы в нервной системе. Эти электронные имплантаты могут воздействовать на цепи, расположенные в головном, среднем и спинном мозге, для улучшения двигательных и вегетативных функций. Они выполняют свою функцию путем увеличения пластичности сохраненных контуров и остаточных выступов в сочетании с программами реабилитационных тренировок. Этот подход особенно полезен, когда площадь поврежденной ткани слишком велика, чтобы ее можно было восстановить чисто физиологическими средствами. Однако этот метод в настоящее время ограничен коротким промежутком времени, прежде чем имплантат будет отторгнут иммунной системой организма в результате воспалительных процессов, таких как глиоз [
У людей проприоцепция считается важной для координации движений, но не у мелких животных, таких как грызуны. Принимая это во внимание, Вагнер и др. [
Существует значительный интерес к использованию роботизированных устройств для проведения тренировок по нейрореабилитации. Роботизированные устройства служат полезной цели снижения нагрузки на терапевтов во время передвижения и более точной регистрации биомедицинских параметров походки, чем это может быть достигнуто с помощью мануальной физиотерапии [
В дополнение к реабилитации и функциональному восстановлению функций конечностей, пластичность и нейрорегенерация с реабилитацией могут принести пользу другим областям, поврежденным огнестрельными ранениями или взрывами бомб, как указано в таблице
Эти комплексные планы лечения предоставляют средства для улучшения результатов и времени восстановления после травмы, которую ранее лечили бы только паллиативно. Такое сокращение времени восстановления и более качественное восстановление позволяют ветеранам, получившим травмы, вернуться к своей повседневной жизни или даже к службе. Заглядывая за пределы текущего горизонта, если такие комплексные планы лечения могут работать для пострадавших, возможно улучшить функции и / или снизить нагрузку на здоровых в настоящее время солдат с помощью интегрированных технологий [
Повреждения нервной системы, наблюдаемые при ТСМ и ЧМТ, вызывают озабоченность из-за их высокой частоты и отсутствия четких и эффективных стратегий лечения. Теперь мы знаем ключевые молекулярные механизмы, лежащие в основе сбоя регенерации нервов в ЦНС и в условиях хронических повреждений в ПНС. Эти знания позволили нам использовать методы нейрорегенерации и индукции пластичности для стимуляции роста зарождающихся нейронов и модуляции лабильных. Методы нейрореабилитации также были разработаны с учетом нашего текущего понимания движения, что приводит к ускоренному восстановлению функций за счет эффективного направления зарождающихся и лабильных нейронов в соответствующие конечные точки. Необходимо провести дальнейшую работу по 1) пониманию баланса между возбуждающими и тормозящими сигналами, 2) определению влияния травмы на этот баланс и 3) определению целей, которые можно использовать для контроля этого баланса. Этот уровень информации позволил бы точно модулировать нейронную сеть, что привело бы к активации локализованной пластичности при сохранении стабильности в других областях. Что касается реабилитационных процедур, нам необходимо понимать характер движений верхних конечностей, поскольку они обладают более высокой степенью свободы, чем походка нижних конечностей. Следующим шагом является применение этих знаний для разработки соответствующего реабилитационного протокола с учетом проприоцептивной обратной связи. Еще одно усилие, которое могло бы принести пользу в данной области, заключается в разработке метода точной отправки нисходящих выходных данных при сохранении восходящих входных данных в двустороннем потоке информации для замены используемого в настоящее время одностороннего потока.
Неприменимо.
Острая аксональная дегенерация
Болезнь Альцгеймера
Гематоэнцефалический барьер
Центральная нервная система
Протеогликаны хондроитинсульфата
Экспериментальный аутоиммунный энцефаломиелит
Индуцированные плюрипотентные стволовые клетки
Миелин-ассоциированный гликопротеин
Рассеянный склероз
Фактор роста нервов
Олигодендроцитарный миелиновый гликопротеин
Периневрональная сеть
Периферическая нервная система
Гены, связанные с регенерацией
Травмы спинного мозга
Черепно-мозговая травма
Виртуальная реальность
Девиво М.Ю. Эпидемиология травматического повреждения спинного мозга: тенденции и будущие последствия. Спинной мозг. 2012;50(5):365-72.
Центр NSCIS. Краткий обзор фактов и цифр. 2019.
Центр защиты и ветеранов от черепно-мозговых травм (DVBIC). В: Do D, редактор. DVBIC worldwide составляет 3 квартал 2000-2019 годов. Соединенные Штаты: Центр защиты и ветеранов от черепно-мозговых травм (DVBIC); 2019.
Регаса ЛЕ, Агими Ю., Стаут К.К.. Черепно-мозговая травма после прохождения военной службы: оценка диагноза и причины травмы. Реабилитация после травмы головы. 2019;34(1):21-9.
MSMR. Причины черепно-мозговой травмы, 2000-2011. MSMR. 2013;20(3):9-14.
Гутьеррес-Гутьеррес Г., Серено М., Мираллес А., Касадо-Саенс Э., Гутьеррес-Ривас Э. Периферическая невропатия, вызванная химиотерапией: клинические особенности, диагностика, стратегии профилактики и лечения. Клинический перевод Oncol. 2010;12(2):81-91.
Шмидт К.Э., Лич Дж.Б. Инженерия нервной ткани: стратегии восстановления и регенерации. Ежегодное издание Biomed Eng. 2003; 5:293-347.
Крукофф М.О., Рахимпур С., Слуцки М.В., Эдгертон В.Р., Тернер Д.А.. Усиление восстановления нервной системы с помощью нейробиологических препаратов, тренировки нейронного интерфейса и нейрореабилитации. Front Neurosci. 2016;10:584.
Kerschensteiner M, Schwab ME, Lichtman JW, Misgeld T. Визуализация аксональной дегенерации и регенерации в поврежденном спинном мозге In vivo. Nat Med. 2005;11(5):572-7.
Кноферле Дж., Кох Дж. К., Остендорф Т., Мишель У., Планшамп В., Вутова П. и др. Механизмы острой аксональной дегенерации зрительного нерва in vivo. PNAS. 2010;107(13):6064-9.
PR Гордона-Уикса. Функционируют микротрубочки и конусы роста. Дж. Нейробиол. 2004;58(1):70–83.
Колодкин А.Л., Тессье-Лавин М. Механизмы и молекулы нейрональной проводки: учебное пособие. Cold Spring Harb Perspect Biol. 2011; 3(6): a001727.
Омотаде Из, Поллитт С.Л., Чжэн Дж.К. Подвижность и управление конусом роста на основе актина. Mol Cell Neurosci. 2017;84: 4-10.
Эрез Х., Малкинсон Г., Прагер-Хуторски М., Де Зеув К.И., Хогенраад К.С., Спира М.Е. Формирование ловушек на основе микротрубочек контролирует сортировку и концентрацию везикул в ограниченных участках регенерирующих нейронов после аксотомии. J Cell Biol. 2007;176(4):497–507.
Брадке Ф., Фосетт Дж.У., Спира М.Е.. Формирование нового конуса роста после аксотомии: предшественник регенерации аксона. Nat Rev Neurosci. 2012;13(3):183-93.
Камбер Д., Эрез Х., Спира М.Е. Локальные кальцийзависимые механизмы определяют, образуется ли на перерезанном конце аксона запоздалая концевая луковица или конус полноценного роста. Exp Neurol. 2009;219(1):112–25.
Хаммарлунд М., Никс П., Хаут Л., Йоргенсен Э.М., Бастиани М. Регенерация аксонов требует консервативного пути MAP-киназы. Наука. 2009;323(5915):802–6.
Гуми Л.Ф., Тан К.Л., Фосетт Дж.У.. Роль локального синтеза и деградации белка в регенерации аксонов. Опыт Neurol. 2010;223(1):28–37.
Доннелли К.Дж., Файнзилбер М., Твисс Дж. Л. Субклеточная коммуникация посредством транспорта РНК и локализованного синтеза белка. Трафик.. 2010;11(12):1498-505.
Чо Ю., Слуцкий Р., Нэгл К.М., Кавалли В. Ядерный экспорт HDAC5, вызванный травмой, важен для регенерации аксонов. Клетка. 2013;155(4):894-908.
Янг Дж., Ву З., Ренье Н., Саймон Д.Дж., Урью К., Парк Д.С. и др. Патологическая гибель аксонов в результате каскада MAPK, который вызывает локальный дефицит энергии. Клетка. 2015;160(1-2):161-76.
Уокер Л.Дж., Саммерс Д.У., Сасаки Ю., Брейс Э.Дж., Милбрандт Дж., Диантонио А. Передача сигналов MAPK способствует дегенерации аксонов за счет ускорения оборота фактора поддержания аксонов NMNAT2. Elife. 2017;6:e22540.
Варгас М.Е., Баррес Б.А. Почему валлеровская дегенерация в ЦНС протекает так медленно? Ежегодное издание Neurosci. 2007;30:153-79.
Остерло Дж.М., Янг Дж., Руни Т.М., Фокс А.Н., Адальберт Р., Пауэлл Э.Х. и др. dSarm / Sarm1 необходим для активации пути гибели аксонов, вызванного травмой. Наука.. 2012;337(6093):481-4.
Хойманн Р., Коршинг С., Бандлоу С., Тоенен Х. Изменения синтеза фактора роста нервов в ненейронных клетках в ответ на перерезку седалищного нерва. J Cell Biol. 1987;104(6):1623-31.
Lindholm D, Heumann R, Hengerer B, Thoenen H. Интерлейкин 1 повышает стабильность и транскрипцию мРНК, кодирующей фактор роста нервов, в культивируемых фибробластах крыс. J Biol Chem. 1988;263(31):16348-51.
Артур-Фаррадж П.Дж., Латуш М., Уилтон Д.К., Квинтес С., Шаброль Э., Банерджи А. и др. C-Jun перепрограммирует шванновские клетки поврежденных нервов для создания репаративных клеток, необходимых для регенерации. Нейрон. 2012;75(4):633-47.
Фенли М.Р., Фосетт Дж.У., Кейнс Р.Дж. Роль шванновских клеток в регенерации аксонов периферических нервов с помощью трансплантатов базальной пластинки мышц. Exp Neurol. 1991;114(3):275-85.
Сулейман У., Гордон Т. Нейробиология повреждения периферических нервов, регенерации и функционального восстановления: от лабораторных исследований до применения у постели больного. Окснер Дж. 2013; 13 (1): 100-8.
Сулейман О.А., Гордон Т. Влияние краткосрочной и долгосрочной денервации шванновских клеток на регенерацию периферических нервов, миелинизацию и размер. Глия. 2000;32(3):234–46.
Санес младший, Маршалл Л.М., Макмахан Ю.Дж. Реиннервация базальной пластинки мышечных волокон после удаления миоволокон. Дифференцировка регенерирующих аксонов в исходных синаптических участках. J Cell Biol. 1978;78(1):176-98.
Пейнтер М.В., Бросиус Лутц А., Ченг Ю.К., Латремольер А., Дуонг К., Миллер К.М. и др. Снижение репаративных реакций шванновских клеток лежит в основе возрастного нарушения аксональной регенерации. Neuron. 2014;83(2):331-43.
Верду Э., Себальос Д., Вильчес Дж.Дж., Наварро Х. Влияние старения на функцию и регенерацию периферических нервов. J Периферическая нервная система.. 2000;5(4):191-208.
Фишер Т.Д., Хайлин М.Дж., Чжао Дж., Мур А.Н., Ваксхэм М.Н., Дэш П.К. Измененная динамика митохондрий и патофизиология ЧМТ. Неврология передней системы. 2016; 10:29.
Чанг Сай, Лян М.З., Чен Л. Текущий прогресс в трансплантации митохондрий, способствующей регенерации нейронов. Перевод Neurodegener. 2019;8:17.
Цзянь Л., Лян М.З., Чанг КИ, Ван К., Чен Л. Митохондриальная терапия способствует регенерации поврежденных нейронов гиппокампа. Biochim Biophys Acta Mol Basis Dis. 2018;1864 (9 Pt B): 3001-12.
Хюбнер Е.А., Стритматтер С.М. Регенерация аксонов в периферической и центральной нервной системах. Результаты исследования различаются. 2009;48:339-51.
Блейкмор В.Ф. Закономерности ремиелинизации в ЦНС. Природа. 1974;249(457):577-8.
Кизил С., Каслин Дж., Кроне В., Бранд М. Нейрогенез взрослых особей и регенерация мозга у рыбок Данио. Разработка нейробиологии.. 2012;72(3):429-61.
Беккер К.Г., Беккер Т. Взрослые рыбки Данио как модель успешной регенерации центральной нервной системы. Restor Neurol Neurosci. 2008;26(2-3):71-80.
Лу П., Ван И., Грэм Л., Макхейл К., Гао М., Ву Д. и др. Рост нервных стволовых клеток на большие расстояния и связность после тяжелого повреждения спинного мозга. Клетка. 2012;150(6):1264-73.
Сунь Ф., Пак К.К., Белин С., Ван Д., Лу Т., Чен Г. и др. Устойчивая регенерация аксонов, вызванная совместным удалением PTEN и SOCS3. Природа. 2011;480(7377):372-5.
Цукор К., Белин С., Ван С, Килан Н., Ван Х, Хэ З. Короткая шпильковая РНК против PTEN усиливает регенеративный рост аксонов кортикоспинального тракта после травмы спинного мозга. J Neurosci. 2013;33(39):15350-61.
Мяо Т., Ву Д., Чжан У, Бо Х., Субанг М.К., Ван П. и др. Подавитель цитокиновой сигнализации-3 подавляет способность активированного преобразователя сигнала и активатора транскрипции-3 стимулировать рост нейритов в первичных сенсорных нейронах крыс. J Neurosci. 2006;26(37):9512-9.
Эйб Н., Борсон Ш., Гамбелло М.Дж., Ван Ф., Кавалли В. Мишень для активации рапамицином (mTOR) млекопитающих увеличивает способность к росту аксонов поврежденных периферических нервов. J Biol Chem. 2010;285(36):28034-43.
Кристи К.Дж., Уэббер К.А., Мартинес Дж.А., Сингх Б., Зочедне Д.У. Ингибирование PTEN для облегчения внутреннего регенеративного роста периферических аксонов взрослого человека. J Neurosci. 2010;30(27):9306-15.
Беновиц ЛИ, Хе З., Голдберг Дж.Л. Достижение мозга: достижения в регенерации зрительного нерва. Exp Neurol. 2017;287 (Pt 3): 365-73.
Галлахер З.Р., Стюард О. Умеренное усиление регенерации сенсорных аксонов в седалищном нерве при условном совместном удалении PTEN и SOCS3 в ганглиях дорсальных корешков взрослых мышей. Exp Neurol. 2018;303:120-33.
Чиа М., Эндрюс М.Р., Чу Д.Дж., Молони Е.Б., Верхаген Дж., Фасслер Р. и др. Экспрессия активированного интегрина способствует регенерации сенсорных аксонов спинного мозга на большие расстояния. J Neurosci. 2016;36(27):7283-97.
Эндрюс М.Р., Солеман С., Чиа М., Тумбарелло Д.А., Мейсон М.Р., Молони Э. и др. Аксональная локализация интегринов в ЦНС зависит от типа нейрона и возраста. eNeuro. 2016;3(4):0029-16.
Боато Ф., Хендрикс С., Уэльсенбек С.К., Хофманн Ф., Гроссе Г., Джалали С. и др. Пептид C3 улучшает восстановление после травмы спинного мозга за счет улучшения регенеративного роста нисходящих волоконных путей. J Cell Sci. 2010;123 (Pt 10): 1652-62.
Лорд-Фонтейн С., Янг Ф., Дип К., Дергам П., Мюнцер С., Трамбле П. и др. Локальное ингибирование передачи сигналов rho рекомбинантным белком BA-210, проницаемым для клеток, предотвращает вторичное повреждение и способствует функциональному восстановлению после острого повреждения спинного мозга. J Нейротравма. 2008;25(11):1309–22.
Фелингс М.Г., Теодор Н., Харроп Дж., Маураис Г., Кунц С., Шаффри К.И. и др. Клинические испытания фазы I /IIa рекомбинантного антагониста белка rho при остром повреждении спинного мозга. J Нейротравма. 2011;28(5):787-96.
Маккерачер Л., Гертин П. Rho как мишень для содействия восстановлению: перевод на клинические исследования с цетрином. Curr Pharm Des. 2013;19(24):4400-10.
Нагоши Н., Фелингс М.Г. Исследуемые препараты для лечения повреждений спинного мозга: обзор доклинических исследований и оценка клинических испытаний с фазы I по II. Экспертное мнение Исследует препараты. 2015;24(5):645–58.
Дэвид С., Агуайо А.Дж. Удлинение аксонов в “мостах” периферической нервной системы после повреждения центральной нервной системы у взрослых крыс. Наука.. 1981;214(4523):931-3.
Хоул Дж. Д., Том В.Дж., Мэйс Д., Вагонер Г., Филлипс Н., Сильвер Дж. Сочетание аутологичного “моста” периферической нервной системы и модификации матрикса хондроитиназой обеспечивает надежную функциональную регенерацию за пределами гемисекционного поражения спинного мозга взрослой крысы. J Neurosci. 2006;26(28):7405-15.
Людвин С.К. Выживание олигодендроцитов при валлеровской дегенерации. Acta Neuropathol. 1990;80(2):184-91.
Лоусон Л.Дж., Перри В.Х., Гордон С. Смена резидентной микроглии в нормальном мозге взрослой мыши. Неврология. 1992;48(2):405-15.
Кошинага М., Уиттмор С.Р. Временная и пространственная активация микроглии в волоконных путях, подвергающихся антероградной и ретроградной дегенерации после повреждения спинного мозга. J Нейротравма. 1995;12(2):209-22.
Штихель С.К., Мюллер Х.В. Рубец от поражения ЦНС: новые перспективы старого регенерационного барьера. Cell Tissue Res. 1998; 294 (1): 1-9.
Фолкнер Дж.Р., Германн Дж.Е., Ву М.Дж., Тэнси К.Е., Доан Н.Б., Софронев М.В.. Реактивные астроциты защищают ткани и сохраняют функцию после травмы спинного мозга. J Neurosci. 2004;24(9):2143-55.
Андерсон М.А., Бурда Дж.Е., Рен Ю., Ао Ю., О'Ши Т.М., Кавагучи Р. и др. Образование рубцов из астроцитов способствует регенерации аксонов центральной нервной системы. Природа. 2016;532(7598):195-200.
Песня I, Дитятев А. Перекрестные помехи между глией, внеклеточным матриксом и нейронами. Brain Res Bull. 2018;136:101-8.
Квок Дж.К., Уоррен П., Фосетт Дж.У.. Хондроитинсульфат: ключевая молекула в матриксе мозга. Int J Biochem Cell Biol. 2012;44(4):582-6.
Брэдбери Э.Дж., Мун Л.Д., Попат Р.Дж., Кинг В.Р., Беннет Г.С., Патель П.Н. и др. Хондроитиназа ABC способствует функциональному восстановлению после травмы спинного мозга. Природа. 2002;416(6881):636–40.
Фуад К., Шнелл Л., Бунге М.Б., Шваб М.Е., Либшер Т., Пирс Д. Д. Сочетание шванновских клеточных мостиков и глиальных трансплантатов с обонятельной оболочкой с хондроитиназой способствует восстановлению опорно-двигательного аппарата после полной перерезки спинного мозга. J Neurosci. 2005;25(5):1169-78.
Алилейн В.Дж., Хорн К.П., Ху Х., Дик ТЕ, Сильвер Дж. Функциональная регенерация дыхательных путей после травмы спинного мозга. Природа. 2011;475(7355):196-200.
Чжан Х., Утимура К., Кадомацу К. Кератансульфат головного мозга и образование глиальных рубцов. Ann Ny Acad Sci. 2006; 1086:81-90.
Шваб Я. Функции белков Nogo и их рецепторов в нервной системе. Наталья Невролог. 2010;11(12):799-811.
Ю Г., Хэ З. Глиальное ингибирование регенерации аксонов ЦНС. Nat Rev Neurosci. 2006;7(8):617-27.
Маккерачер Л., Дэвид С. Снимаем тормоза при восстановлении спинного мозга. Nat Med. 2004;10(10):1052-3.
Чен К., Марш Б.К., Коуэн М., Аль'Джобури Ю.Д., Гигаут С., Смит С.К. и др. Последовательная терапия антителами против Nogo-a и тренировки на беговой дорожке приводят к кумулятивным улучшениям после травмы спинного мозга у крыс. Exp Neurol. 2017;292:135-44.
Ли Дж.К., Джеффруа К.Г., Чан А.Ф., Толентино К.Е., Кроуфорд М. Дж., Лил М. А. и др. Оценка регенерации и прорастания спинномозговых аксонов у мышей с дефицитом Nogo, MAG и OMgp. Нейрон. 2010;66(5):663–70.
Аспберг А., Миура Р., Бурдулус С., Шимонака М., Хайнегард Д., Шахнер М. и др. Лектиновые домены лектиканов С-типа, семейства агрегирующих протеогликаны хондроитинсульфата, связывают тенасцин-R посредством межбелковых взаимодействий, независимых от углеводной части. PNAS. 1997;94(19):10116-21.
Де Винтер Ф., Аудега М., Ланкхорст А.Я., Хамерс Ф. П., Блитс Б., Рюйтенберг М. Я. и др. Вызванная травмой экспрессия семафорина 3-го класса в спинном мозге крысы. Exp Neurol. 2002;175(1):61–75.
Чаттерджи Н.Р. О химических аспектах активности пенициллина. Индостанский антибиотик Bull. 1972;14(1):184-90.
Таннемаат М.Р., Корецка Дж., Элерт Э.М., Мейсон М.Р., ван Дуйнен С.Г., Бур Г. Дж. и др. Невринома человека содержит повышенные уровни семафорина 3A, который окружает нервные волокна и уменьшает расширение нейритов in vitro. J Neurosci. 2007;27(52):14260-4.
Шарма А., Верхаген Дж., Харви А.Р. Рецепторные комплексы для каждого из семафоринов класса 3. Нейроны передней клетки. 2012; 6:28.
Wittenberg GF. Опыт, переназначение коры и восстановление при заболеваниях головного мозга. Нейробиологический дис. ... канд. мед. наук.. 2010;37(2):252-8.
Мерцених М.М., Нельсон Р.Дж., Страйкер М.П., Цинадер М.С., Шоппманн А., Зук Дж.М.. Изменения соматосенсорной карты коры головного мозга после ампутации пальца у взрослых обезьян. J Comp Neurol. 1984;224(4):591-605.
Клейм Я.А., Барбай С., Нудо Р.Дж. Функциональная реорганизация моторной коры головного мозга крыс после обучения двигательным навыкам. Дж. Нейрофизиол. 1998;80(6):3321–5.
Нудо Р.Дж., Милликен Г.В., Дженкинс В.М., Мерцених М. Изменения представлений о движениях в первичной моторной коре взрослых беличьих обезьян в зависимости от использования. J Neurosci. 1996;16(2):785-807.
Паскуаль-Леоне А., Нгуетт Д., Коэн Л.Г., Бразил-Нето Дж.П., Камарота А., Халлетт М. Модуляция мышечных реакций, вызванных транскраниальной магнитной стимуляцией во время приобретения новых навыков мелкой моторики. Дж. Нейрофизиол. 1995;74(3):1037–45.
Данкауз Н., Барбай С., Фрост С.Б., Зубина Е.В., Плауц Э.Дж., Манкен Дж. Д. и др. Влияние небольших ишемических поражений в первичной моторной коре на нейрофизиологическую организацию вентральной премоторной коры. J Нейрофизиология. 2006;96(6):3506–11.
Грефкес С., Уорд Н.С.. Реорганизация коры головного мозга после инсульта: насколько сильно и насколько функционально? Нейробиолог. 2014;20(1):56-70.
Чо К.К., Беар М.Ф. Содействие неврологическому восстановлению функций посредством метапластичности. Нейрол будущего. 2010;5(1):21–6.
Ли Кью, Наваккоде С., Роткегель М., Сун ТВУ, Саджикумар С., Корт М. Механизмы метапластичности восстанавливают пластичность и ассоциативность на животной модели болезни Альцгеймера. PNAS. 2017;114(21):5527-32.
Кэссиди Дж.М., Гиллик Б.Т., Кэри Мл. Подготовка мозга к использованию метапластичности в реабилитации после инсульта. Физ.. 2014;94(1):139-50.
Игер П., Гилсон М. Модели метапластичности: обзор концепций. Front Computation Neurosci. 2015;9:138.
Дебанн Д., Инглеберт Ю., Руссье М. Пластичность внутренней возбудимости нейронов. Настоящее мнение о нейробиологии. 2019;54:73–82.
Абрахам У.К. Метапластичность: настройка синапсов и сетей на пластичность. Нат Рев Нейробиолог.. 2008;9(5):387.
Монк Т., Савин С., Лакке Дж. Оптимальный нейронный вывод интенсивности стимула. Sci Rep. 2018; 8 (1):10038.
Чжан У., Линден Д.Дж. Другая сторона инграммы: вызванные опытом изменения внутренней возбудимости нейронов. Профессор неврологии.. 2003;4(11):885-900.
Цорнер Б., Бахман Л.К., Филли Л., Капица С., Гулло М., Боллигер М. и др. Стремление к пластичности центральной нервной системы: вклад ствола головного мозга в восстановление опорно-двигательного аппарата у крыс с повреждением спинного мозга. Мозг. 2014;137 (Pt 6): 1716-32.
Линдау Н.Т., Баннингер Б.Дж., Гулло М., Гуд Н.А., Бахман Л.К., Старки М.Л. и др. Перестройка кортикоспинального тракта у взрослой крысы после одностороннего инсульта и анти-Nogo-a терапии. Мозг. 2014;137 (Pt 3):739-56.
Розенцвейг Е.С., Саледжио Е.А., Лян Дж.Дж., Вебер Дж.Л., Вайнхольц К.А., Брок Дж.Х. и др. Хондроитиназа улучшает анатомические и функциональные исходы после травмы спинного мозга приматов. Nat Neurosci. 2019;22(8):1269-75.
Гарсия-Алиас Г., Бархейсен С., Бакл М., Фосетт Дж.У.. Лечение хондроитиназой ABC открывает окно возможностей для реабилитации в зависимости от конкретной задачи. Nat Neurosci. 2009;12(9):1145-51.
Валь А.С., Шваб М.Е. Поиск оптимальной парадигмы реабилитации после инсульта: усиление роста волокон и тренировка мозга в нужный момент. Front Hum Neurosci. 2014;8:381.
Хенш Т.К., Билимория П.М. Повторное открытие окон: манипулирование критическими периодами развития мозга. Cerebrum. 2012; 2012:11.
Янг Э.Дж., Ан С., Рю Дж., Чхве М.С., Чхве С., Чонг Ю.Х. и др. Флороглюцинол ослабляет когнитивный дефицит на мышиной модели болезни Альцгеймера 5xfad. PLoS One. 2015;10(8): e0135686.
Джейкобс К.М., Донохью Дж.П. Изменение формы моторной карты коры головного мозга путем выявления скрытых внутрикорковых связей. Наука.. 1991;251(4996):944-7.
Хигли М.Дж., Контрерас Д. Сбалансированное возбуждение и торможение определяют время всплеска во время частотной адаптации. J Neurosci. 2006;26(2):448-57.
Окунь М., Лэмпл И. Мгновенная корреляция возбуждения и торможения во время текущей и вызванной сенсорными ощущениями деятельности. Nat Neurosci. 2008;11(5):535-7.
Сюэ М., Аталла Б.В., Сканциани М. Выравнивание соотношений возбуждения и торможения в нейронах зрительной коры. Природа. 2014;511(7511):596-600.
Чиу К.К., Барберис А., Хигли М.Дж. Сохранение баланса: различные формы долговременной ГАМКергической синаптической пластичности. Nat Rev Neurosci. 2019;20(5):272-81.
Lourenco J, De Stasi AM, Deleuze C, Bigot M, Pazienti A, Aguirre A, et al. Modulation of coordinated activity across cortical layers by plasticity of inhibitory synapses. Cell Rep. 2020;30(3):630–41 e5.
Xu T, Yu X, Perlik AJ, Tobin WF, Zweig JA, Tennant K, et al. Rapid formation and selective stabilization of synapses for enduring motor memories. Nature. 2009;462(7275):915–9.
Уилбрехт Л., Холтмаат А., Райт Н., Фокс К., Свобода К. Структурная пластичность лежит в основе функциональной пластичности кортикальных цепей, зависящей от опыта. J Neurosci. 2010;30(14):4927-32.
Orlando C, Ster J, Gerber U, Fawcett JW, Raineteau O. Perisynaptic chondroitin sulfate proteoglycans restrict structural plasticity in an integrin-dependent manner. J Neurosci. 2012;32(50):18009–17 17a.
Kwok JC, Dick G, Wang D, Fawcett JW. Extracellular matrix and perineuronal nets in CNS repair. Dev Neurobiol. 2011;71(11):1073–89.
Carulli D, Pizzorusso T, Kwok JC, Putignano E, Poli A, Forostyak S, et al. Animals lacking link protein have attenuated perineuronal nets and persistent plasticity. Brain. 2010;133(Pt 8):2331–47.
Sugiyama S, Prochiantz A, Hensch TK. From brain formation to plasticity: insights on Otx2 homeoprotein. Develop Growth Differ. 2009;51(3):369–77.
Bavelier D, Levi DM, Li RW, Dan Y, Hensch TK. Removing brakes on adult brain plasticity: from molecular to behavioral interventions. J Neurosci. 2010;30(45):14964–71.
Bryden DW, Tilghman JI, Hinds SR 2nd. Blast-related traumatic brain injury: current concepts and research considerations. J Exp Neurosci. 2019;13:1179069519872213.
Pearn ML, Niesman IR, Egawa J, Sawada A, Almenar-Queralt A, Shah SB, et al. Pathophysiology associated with traumatic brain injury: current treatments and potential novel therapeutics. Cell Mol Neurobiol. 2017;37(4):571–85.
Cote MP, Murray M, Lemay MA. Rehabilitation strategies after spinal cord injury: inquiry into the mechanisms of success and failure. J Neurotrauma. 2017;34(10):1841–57.
Loy K, Bareyre FM. Rehabilitation following spinal cord injury: how animal models can help our understanding of exercise-induced neuroplasticity. Neural Regen Res. 2019;14(3):405–12.
Asboth L, Friedli L, Beauparlant J, Martinez-Gonzalez C, Anil S, Rey E, et al. Cortico-reticulo-spinal circuit reorganization enables functional recovery after severe spinal cord contusion. Nat Neurosci. 2018;21(4):576–88.
van den Brand R, Heutschi J, Barraud Q, DiGiovanna J, Bartholdi K, Huerlimann M, et al. Restoring voluntary control of locomotion after paralyzing spinal cord injury. Science. 2012;336(6085):1182–5.
Gad P, Lee S, Terrafranca N, Zhong H, Turner A, Gerasimenko Y, et al. Non-invasive activation of cervical spinal networks after severe paralysis. J Neurotrauma. 2018;35(18):2145–58.
Inanici F, Samejima S, Gad P, Edgerton VR, Hofstetter CP, Moritz CT. Transcutaneous electrical spinal stimulation promotes long-term recovery of upper extremity function in chronic tetraplegia. IEEE Trans Neural Syst Rehabil Eng. 2018;26(6):1272–8.
Harkema S, Gerasimenko Y, Hodes J, Burdick J, Angeli C, Chen Y, et al. Effect of epidural stimulation of the lumbosacral spinal cord on voluntary movement, standing, and assisted stepping after motor complete paraplegia: a case study. Lancet. 2011;377(9781):1938–47.
Gad P, Gerasimenko Y, Zdunowski S, Turner A, Sayenko D, Lu DC, et al. Weight bearing over-ground stepping in an exoskeleton with non-invasive spinal cord neuromodulation after motor complete paraplegia. Front Neurosci. 2017;11:333.
Grahn PJ, Lavrov IA, Sayenko DG, Van Straaten MG, Gill ML, Strommen JA, et al. Enabling task-specific volitional motor functions via spinal cord neuromodulation in a human with paraplegia. Mayo Clin Proc. 2017;92(4):544–54.
Gill ML, Grahn PJ, Calvert JS, Linde MB, Lavrov IA, Strommen JA, et al. Neuromodulation of lumbosacral spinal networks enables independent stepping after complete paraplegia. Nat Med. 2018;24(11):1677–82.
Jung SY, Seo TB, Kim DY. Treadmill exercise facilitates recovery of locomotor function through axonal regeneration following spinal cord injury in rats. J Exerc Rehabil. 2016;12(4):284–92.
Keefe KM, Sheikh IS, Smith GM. Targeting neurotrophins to specific populations of neurons: NGF, BDNF, and NT-3 and their relevance for treatment of spinal cord injury. Int J Mol Sci. 2017;18(3):548.
Yang Z, Zhang A, Duan H, Zhang S, Hao P, Ye K, et al. NT3-chitosan elicits robust endogenous neurogenesis to enable functional recovery after spinal cord injury. PNAS. 2015;112(43):13354–9.
Rao JS, Zhao C, Zhang A, Duan H, Hao P, Wei RH, et al. NT3-chitosan enables de novo regeneration and functional recovery in monkeys after spinal cord injury. PNAS. 2018;115(24):E5595–604.
Rosenzweig ES, Brock JH, Lu P, Kumamaru H, Salegio EA, Kadoya K, et al. Restorative effects of human neural stem cell grafts on the primate spinal cord. Nat Med. 2018;24(4):484–90.
Cho N, Squair JW, Bloch J, Courtine G. Neurorestorative interventions involving bioelectronic implants after spinal cord injury. Bioelectron Med. 2019;5:10.
Wagner FB, Mignardot JB, Le Goff-Mignardot CG, Demesmaeker R, Komi S, Capogrosso M, et al. Targeted neurotechnology restores walking in humans with spinal cord injury. Nature. 2018;563(7729):65–71.
Formento E, Minassian K, Wagner F, Mignardot JB, Le Goff-Mignardot CG, Rowald A, et al. Electrical spinal cord stimulation must preserve proprioception to enable locomotion in humans with spinal cord injury. Nat Neurosci. 2018;21(12):1728–41.
Moritz CT. Now is the critical time for engineered neuroplasticity. Neurotherapeutics. 2018;15(3):628–34.
Taccola G, Sayenko D, Gad P, Gerasimenko Y, Edgerton VR. and yet it moves: recovery of volitional control after spinal cord injury. Prog Neurobiol. 2018;160:64–81.
Sburlea AI, Muller-Putz GR. Exploring representations of human grasping in neural, muscle and kinematic signals. Sci Rep. 2018;8(1):16669.
Paret C, Goldway N, Zich C, Keynan JN, Hendler T, Linden D, et al. Current progress in real-time functional magnetic resonance-based neurofeedback: methodological challenges and achievements. Neuroimage. 2019;202:116107.
Hussain S. State-of-the-art robotic gait rehabilitation orthoses: design and control aspects. Neurorehabilitation. 2014;35(4):701–9.
Aurich-Schuler T, Grob F, van Hedel HJA, Labruyere R. Can lokomat therapy with children and adolescents be improved? An adaptive clinical pilot trial comparing guidance force, path control, and freed. J Neuroeng Rehabil. 2017;14(1):76.
Massetti T, da Silva TD, Crocetta TB, Guarnieri R, de Freitas BL, Bianchi Lopes P, et al. The clinical utility of virtual reality in neurorehabilitation: a systematic review. J Cent Nerv Syst Dis. 2018;10:1179573518813541.
Rose T, Nam CS, Chen KB. Immersion of virtual reality for rehabilitation - review. Appl Ergon. 2018;69:153–61.
Laver KE, Lange B, George S, Deutsch JE, Saposnik G, Crotty M. Virtual reality for stroke rehabilitation. Cochrane Database Syst Rev. 2017;11:CD008349.
Lozano AM, Lipsman N. Probing and regulating dysfunctional circuits using deep brain stimulation. Neuron. 2013;77(3):406–24.
van Hartevelt TJ, Cabral J, Deco G, Moller A, Green AL, Aziz TZ, et al. Neural plasticity in human brain connectivity: the effects of long term deep brain stimulation of the subthalamic nucleus in Parkinson's disease. PLoS One. 2014;9(1):e86496.
Bachmann LC, Matis A, Lindau NT, Felder P, Gullo M, Schwab ME. Deep brain stimulation of the midbrain locomotor region improves paretic hindlimb function after spinal cord injury in rats. Sci Transl Med. 2013;5(208):208ra146.
Tsang EW, Hamani C, Moro E, Mazzella F, Poon YY, Lozano AM, et al. Involvement of the human pedunculopontine nucleus region in voluntary movements. Neurology. 2010;75(11):950–9.
Ganzer PD, Darrow MJ, Meyers EC, Solorzano BR, Ruiz AD, Robertson NM, et al. Closed-loop neuromodulation restores network connectivity and motor control after spinal cord injury. Elife. 2018;7.
Hulsey DR, Hays SA, Khodaparast N, Ruiz A, Das P, Rennaker RL 2nd, et al. Reorganization of motor cortex by vagus nerve stimulation requires cholinergic innervation. Brain Stimul. 2016;9(2):174–81.
Edgerton VR, Gad P. Is the vagus nerve our neural connectome? Elife. 2018;7.
Hentall ID, Burns SB. Restorative effects of stimulating medullary raphe after spinal cord injury. J Rehabil Res Dev. 2009;46(1):109–22.
Baciu M, Acher A, Kauffmann L, Cousin E, Boilley C, Hueber T, et al. Effect of visual feedback on speech recovery and language plasticity in patients with post-stroke non-fluent aphasia. Functional MRI assessment. Ann Phys Rehabil Med. 2016;59:e75–e6.
Nardo D, Holland R, Leff AP, Price CJ, Crinion JT. Less is more: neural mechanisms underlying anomia treatment in chronic aphasic patients. Brain. 2017;140(11):3039–54.
Turkeltaub PE. Brain stimulation and the role of the right hemisphere in aphasia recovery. Curr Neurol Neurosci Rep. 2015;15(11):72.
Meinzer M, Rodriguez AD, Gonzalez Rothi LJ. First decade of research on constrained-induced treatment approaches for aphasia rehabilitation. Arch Phys Med Rehabil. 2012;93(1 Suppl):S35–45.
Yamada N, Kakuda W, Yamamoto K, Momosaki R, Abo M. Atomoxetine administration combined with intensive speech therapy for post-stroke aphasia: evaluation by a novel SPECT method. Int J Neurosci. 2016;126(9):829–38.
Woodhead ZV, Crinion J, Teki S, Penny W, Price CJ, Leff AP. Auditory training changes temporal lobe connectivity in 'Wernicke's aphasia': a randomised trial. J Neurol Neurosurg Psychiatry. 2017;88(7):586–94.
Norise C, Hamilton RH. Non-invasive brain stimulation in the treatment of post-stroke and neurodegenerative aphasia: parallels, differences, and lessons learned. Front Hum Neurosci. 2016;10:675.
Otal B, Olma MC, Floel A, Wellwood I. Inhibitory non-invasive brain stimulation to homologous language regions as an adjunct to speech and language therapy in post-stroke aphasia: a meta-analysis. Front Hum Neurosci. 2015;9:236.
Meinzer M, Darkow R, Lindenberg R, Floel A. Electrical stimulation of the motor cortex enhances treatment outcome in post-stroke aphasia. Brain. 2016;139(Pt 4):1152–63.
Marangolo P, Fiori V, Sabatini U, De Pasquale G, Razzano C, Caltagirone C, et al. Bilateral transcranial direct current stimulation language treatment enhances functional connectivity in the left hemisphere: preliminary data from aphasia. J Cogn Neurosci. 2016;28(5):724–38.
Hartwigsen G, Saur D. Neuroimaging of stroke recovery from aphasia - insights into plasticity of the human language network. Neuroimage. 2019;190:14–31.
Barritt AW, Smithard DG. Role of cerebral cortex plasticity in the recovery of swallowing function following dysphagic stroke. Dysphagia. 2009;24(1):83–90.
Li L, Li Y, Huang R, Yin J, Shen Y, Shi J. The value of adding transcutaneous neuromuscular electrical stimulation (VitalStim) to traditional therapy for post-stroke dysphagia: a randomized controlled trial. Eur J Phys Rehabil Med. 2015;51(1):71–8.
Horton JC, Fahle M, Mulder T, Trauzettel-Klosinski S. Adaptation, perceptual learning, and plasticity of brain functions. Graefes Arch Clin Exp Ophthalmol. 2017;255(3):435–47.
Liu TT, Behrmann M. Functional outcomes following lesions in visual cortex: implications for plasticity of high-level vision. Neuropsychologia. 2017;105:197–214.
Legge GE, Chung STL. Low vision and plasticity: implications for rehabilitation. Annu Rev Vis Sci. 2016;2:321–43.
Kober SE, Schweiger D, Reichert JL, Neuper C, Wood G. Upper alpha based neurofeedback training in chronic stroke: brain plasticity processes and cognitive effects. Appl Psychophysiol Biofeedback. 2017;42(1):69–83.
Wang CJ, Wu Y, Zhang Q, Yu KW, Wang YY. An enriched environment promotes synaptic plasticity and cognitive recovery after permanent middle cerebral artery occlusion in mice. Neural Regen Res. 2019;14(3):462–9.
Schneider CL, Majewska AK, Busza A, Williams ZR, Mahon BZ, Sahin B. Selective serotonin reuptake inhibitors for functional recovery after stroke: similarities with the critical period and the role of experience-dependent plasticity. J Neurol. 2019.
Stradecki-Cohan HM, Cohan CH, Raval AP, Dave KR, Reginensi D, Gittens RA, et al. Cognitive deficits after cerebral ischemia and underlying dysfunctional plasticity: potential targets for recovery of cognition. J Alzheimers Dis. 2017;60(s1):S87–105.
Nielson JL, Haefeli J, Salegio EA, Liu AW, Guandique CF, Stuck ED, et al. Leveraging biomedical informatics for assessing plasticity and repair in primate spinal cord injury. Brain Res. 2015;1619:124–38.
Erschbamer M, Pernold K, Olson L. Inhibiting epidermal growth factor receptor improves structural, locomotor, sensory, and bladder recovery from experimental spinal cord injury. J Neurosci. 2007;27(24):6428–35.
Bhagat SM, Butler SS, Taylor JR, McEwen BS, Strittmatter SM. Erasure of fear memories is prevented by Nogo receptor 1 in adulthood. Mol Psychiatry. 2016;21(9):1281–9.
Lai JH, Karlsson TE, Wu JC, Huang CZ, Chen YH, Kang SJ, et al. Role of Nogo Receptor-1 for recovery of balance, cognition, and emotion after mild traumatic brain injury in mice. J Neurotrauma. 2019;36(7):1054–9.
Mudie KL, Boynton AC, Karakolis T, O'Donovan MP, Kanagaki GB, Crowell HP, et al. Consensus paper on testing and evaluation of military exoskeletons for the dismounted combatant. J Sci Med Sport. 2018;21(11):1154–61.
Gorgey AS. Robotic exoskeletons: the current pros and cons. World J Orthop. 2018;9(9):112–9.